- Код статьи
- S0002188125010117-1
- DOI
- 10.31857/S0002188125010117
- Тип публикации
- Обзор
- Статус публикации
- Опубликовано
- Авторы
- Том/ Выпуск
- Том / Номер выпуска 1
- Страницы
- 89-104
- Аннотация
- Многие действующие вещества пестицидов являются опасными токсикантами, способными нарушать стабильность природных и агрокультурных экосистем и причинять необратимый вред здоровью человека при попадании в организм. Кроме того, ежегодно разрабатывают от нескольких единиц до нескольких десятков новых действующих веществ пестицидов и препаратов на их основе. Это определяет критическую необходимость в контроле их применения и содержания в объектах окружающей среды, особенно в сельскохозяйственной продукции. Развитие современных химических аналитических методов помогает повысить эффективность такого контроля. Совершенствование методов экстрагирования пестицидов из крайне сложных матриц почв и сельскохозяйственной продукции позволяет значительно ускорить и удешевить проведение единичного анализа, а улучшение аналитического оборудования позволяет определять пикограммовые содержания целевых пестицидов или проводить мониторинговые исследования образцов для идентификации загрязнителей.
- Ключевые слова
- пестициды сельскохозяйственная продукция инсектициды гербициды фунгициды хлорорганические пестициды фосфорорганические пестициды газовая хроматография жидкостная хроматография масс-спектрометрия QuEChERS-пробоподготовка твердофазная экстракция дисперсионная жидкость-жидкостная микроэкстракция
- Дата публикации
- 16.09.2025
- Год выхода
- 2025
- Всего подписок
- 0
- Всего просмотров
- 2
Библиография
- 1. О безопасном обращении с пестицидами и агрохимикатами: Федеральный закон № 109-ФЗ (редакция от 10 июня 2023 г.) [принят Государственной думой 19 июля 1997 г. // СПС КонсультантПлюс. Режим доступа: локальный, по договору. Обновление еженедельно.
- 2. Продовольственная и сельскохозяйственная организации Объединенных Наций [официальный сайт]. Рим. URL: https://www.fao.org/home/ru (дата обращения: 10.10.2023).
- 3. Всемирная организация здравоохранения: [официальный сайт]. Женева. URL: https://www.who.int/ru (дата обращения: 17.11.2023).
- 4. Andreu V., Picó Y. Determination of pesticides and their degradation products in soil: critical review and comparison of methods // TrAC Trend. Analyt. Chem. 2004. V. 23. № 10–11. P. 772–789.
- 5. Единая межведомственная информационно-статистическая система (ЕМИСС): [официальный сайт]. Москва. URL: https://fedstat.ru/indicator/40540 (дата обращения: 23.11.2023).
- 6. Захаренко В.А. Особенности развития рынка пестицидов в России // Защита и карантин раст. 2020. № 2. С. 34–36.
- 7. Зинченко В.А. Химическая защита растений: средства, технология и экологическая безопасность. М.: КолосС, 2012. 127 с.
- 8. Damak M., Hyder M.N., Varanasi K.K. Enhancing droplet deposition through in-situ precipitation // Nat. Commun. 2016. V. 7. № 1. P. 125–130.
- 9. Xiang Y. Controlling pesticide loss through nanonetworks // ACS Sust. Chem. Engin. 2014. V. 2. № 4. P. 918–924.
- 10. Su H. Tackling pesticide overusing through foliar deposition and retention: Frontiers and challenges //Adv. Agrochem. 2023. V. 2. № 4. P. 298–305.
- 11. Specht W., Pelz S., Gilsbach W. Gas-chromatographic determination of pesticide residues after clean-up by gel-permeation chromatography and mini-silica gel-column chromatography: 6. Communication: Replacement of dichloromethane by ethyl acetate/cyclohexane in liquid-liquid partition and simplified conditions for extraction and liquid-liquid partition // Fresen. J. Analyt. Chem. 1995. V. 353. P. 183–190.
- 12. Sannino A., Bolzoni L., Bandini M. Application of liquid chromatography with electrospray tandem mass spectrometry to the determination of a new generation of pesticides in processed fruits and vegetables // J. Chromatograp. 2004. V. 1036. № 2. P. 161–169.
- 13. Li Y., Yuan T. Detection of pyrethroid pesticide residues in concentrate juice // Chin. J. Health Lab. Technol. 2008. V. 18. P. 1774–1775.
- 14. Cabras P. Fenhexamid residues in grapes and wine // Food Addit. Contam. 2001. V. 18. № 7. P. 625–629.
- 15. Rezaee M. Determination of organic compounds in water using dispersive liquid-liquid microextraction // J. Chromatograp. 2006. V. 1116. №. 1–2. P. 1–9.
- 16. Min Shin J. Comparison of QuEChERS and Liquid-Liquid extraction methods for the simultaneous analysis of pesticide residues using LC-MS/MS // Food Control. 2022. V. 141. P. 109202.
- 17. Дмитриенко С.Г. Дисперсионная жидкостно-жидкостная микроэкстракция органических соединений // Журн. аналит. хим. 2020. Т. 75. № 10. С. 867–884.
- 18. Regueiro J. Ultrasound-assisted emulsification-microextraction of emergent contaminants and pesticides in environmental waters // J. Chromatograp. 2008. V. 1190. № 1–2. P. 27–38.
- 19. Seebunrueng K., Santaladchaiyakit Y., Srijaranai S. Vortex-assisted low density solvent based demulsified dispersive liquid-liquid microextraction and high-performance liquid chromatography for the determination of organophosphorus pesticides in water samples // Chemosphere. 2014. V. 103. P. 51–58.
- 20. Zhou Q. Ultrasound-enhanced air-assisted liquid-liquid microextraction for the UPLC determination of organophosphorus pesticides in river water // Microchem. J. 2022. V. 183. P. 108046.
- 21. Torbati M. Development of microwave-assisted liquid-liquid extraction combined with lighter than water in syringe dispersive liquid-liquid microextraction using deep eutectic solvents: Application in extraction of some herbicides from wheat // Microchem. J. 2019. V. 147. P. 1103–1108.
- 22. Ya-Li W. Benzyl functionalized ionic liquid as new extraction solvent of dispersive liquid-liquid microextraction for enrichment of organophosphorus pesticides and aromatic compounds // Chin. J. Analyt. Chem. 2016. V. 44. № 6. P. 942–949.
- 23. Caldas S.S. Multi-residue method for determination of 58 pesticides, pharmaceuticals and personal care products in water using solvent demulsification dispersive liquid-liquid microextraction combined with liquid chromatography-tandem mass spectrometry // Talanta. 2016. V. 146. P. 676–688.
- 24. Jeannot M.A., Cantwell F.F. Mass transfer characteristics of solvent extraction into a single drop at the tip of a syringe needle // Analyt. Chem. 1997. V. 69. № 2. P. 235–239.
- 25. Amvrazi E.G., Tsiropoulos N.G. Application of single-drop microextraction coupled with gas chromatography for the determination of multiclass pesticides in vegetables with nitrogen phosphorus and electron capture detection // J. Chromatograp. 2009. V. 1216. № 14. P. 2789–2797.
- 26. Tang S. Single-drop microextraction // TrAC Trend. Analyt. Chem. 2018. V. 108. P. 306–313.
- 27. Zhang M. Mixed liquids for single-drop microextraction of organochlorine pesticides in vegetables // Talanta. 2008. V. 74. № 4. P. 599–604.
- 28. Wu L. Dynamic microwave-assisted extraction online coupled with single drop microextraction of organophosphorus pesticides in tea samples // J. Chromatograp. 2015. V. 1407. P. 42–51.
- 29. Farina Y. Determination of pesticide residues in leafy vegetables at parts per billion levels by a chemometric study using GC-ECD in Cameron Highlands, Malaysia // Food Chem. 2017. V. 224. P. 55–61.
- 30. Katsumata H. Preconcentration of diazinon using multiwalled carbon nanotubes as solid-phase extraction adsorbents // Microchem. J. 2008. V. 88. № 1. P. 82–86.
- 31. Liu Y. Magnetic porous carbon derived from a bimetallic metal-organic framework for magnetic solid-phase extraction of organochlorine pesticides from drinking and environmental water samples // J. Chromatograp. 2017. V. 1479. P. 55–61.
- 32. Barker S.A., Long A.R., Short C.R. Isolation of drug residues from tissues by solid phase dispersion // J. Chromatograp. 1989. V. 475. № 2. P. 353–361.
- 33. Wang Y., Xiao L., Cheng M. Determination of phenylureas herbicides in food stuffs based on matrix solid-phase dispersion extraction and capillary electrophoresis with electrochemiluminescence detection // J. Chromatograp. 2011. V. 1218. № 50. P. 9115–9119.
- 34. Hu Y. Simultaneous determination of phenylurea herbicides in yam by capillary electrophoresis with electrochemiluminescence detection // J. Chromatograp. 2015. V. 986. P. 143–148.
- 35. Schenck F.J., Wagner R. Screening procedure for organochlorine and organophosphorus pesticide residues in milk using matrix solid phase dispersion (MSPD) extraction and gas chromatographic determination // Food Addit. Contam. 1995. V. 12. № 4. P. 535–541.
- 36. Arthur C.L., Pawliszyn J. Solid phase microextraction with thermal desorption using fused silica optical fibers // Analyt. Chem. 1990. V. 62. № 19. P. 2145–2148.
- 37. Pang L. Trace determination of organophosphate esters in environmental water samples with an ionogel‐based nanoconfined ionic liquid fiber coating for solid‐phase microextraction with gas chromatography and flame photometric detection // J. Separat. Sci. 2016. V. 39. № 22. P. 4415–4421.
- 38. Yang Y. An ultrastable 2D covalent organic framework coating for headspace solid-phase microextraction of organochlorine pesticides in environmental water // J. Hazard. Mater. 2023. V. 452. P. 131–148.
- 39. Valenzuela E.F. A new carbon nanomaterial solid-phase microextraction to pre-concentrate and extract pesticides in environmental water // Talanta. 2020. V. 217. P. 121–131.
- 40. Anastassiades M. Fast and easy multiresidue method employing acetonitrile extraction/partitioning and “dispersive solid-phase extraction” for the determination of pesticide residues in produce // J. AOAC Inter. 2003. V. 86. № 2. P. 412–431.
- 41. Han L. Evaluation of a recent product to remove lipids and other matrix co-extractives in the analysis of pesticide residues and environmental contaminants in foods // J. Chromatograp. 2016. V. 1449. P. 17–29.
- 42. Tette P.A.S. Multiclass method for pesticides quantification in honey by means of modified QuEChERS and UHPLC-MS/MS // Food Chem. 2016. V. 211. Р. 130–139.
- 43. Bernardi G. An effective method for pesticide residues determination in tobacco by GC-MS/MS and UHPLC-MS/MS employing acetonitrile extraction with low-temperature precipitation and d-SPE clean-up // Talanta. 2016. V. 161. Р. 40–47.
- 44. Dankyi E. Application of the QuEChERS procedure and LC-MS/MS for the assessment of neonicotinoid insecticide residues in cocoa beans and shells // J. Food Composit. Anal. 2015. V. 44. Р. 149–157.
- 45. He Z. Multiresidue analysis of over 200 pesticides in cereals using a QuEChERS and gas chromatography-tandem mass spectrometry-based method // Food Сhem. 2015. V. 169. Р. 372–380.
- 46. Golge O., Koluman A., Kabak B. Validation of a modified QuEChERS method for the determination of 167 pesticides in milk and milk products by LC-MS/MS // Food Аnalyt. Method. 2018. V. 11. № 4. Р. 1122–1148.
- 47. Zheng W. Development and validation of modified QuEChERS method coupled with LC-MS/MS for simultaneous determination of cymiazole, fipronil, coumaphos, fluvalinate, amitraz, and its metabolite in various types of honey and royal jelly // J. Chromatograp. 2018. V. 1072. Р. 60–69.
- 48. Herrmann S.S., Poulsen M.E. Clean-up of cereal extracts for gas chromatography-tandem quadrupole mass spectrometry pesticide residues analysis using primary secondary amine and C18 // J. Chromatograp. 2015. V. 1423. Р. 47–53.
- 49. Rejczak T., Tuzimski T. A review of recent developments and trends in the QuEChERS sample preparation approach // Open Chem. 2015. V. 13. № 1. Р. 980–1010.
- 50. Vidal J.L.M. Determination of pesticide transformation products: A review of extraction and detection methods // J. Chromatograph. 2009. V. 1216. № 40. Р. 6767–6788.
- 51. Andrade G.C.R.M. Liquid chromatography-electrospray ionization tandem mass spectrometry and dynamic multiple reaction monitoring method for determining multiple pesticide residues in tomato // Food Chem. 2015. V. 175. Р. 57–65.
- 52. Han Y. Simultaneous determination of 70 pesticide residues in leek, leaf lettuce and garland chrysanthemum using modified QuEChERS method with multi-walled carbon nanotubes as reversed-dispersive solid-phase extraction materials // J. Chromatograp. 2015. V. 1005. Р. 56–64.
- 53. Sinha S.N., Vasudev K., Rao M.V.V. Quantification of organophosphate insecticides and herbicides in vegetable samples using the “Quick Easy Cheap Effective Rugged and Safe” (QuEChERS) method and a high-performance liquid chromatography-electrospray ionization-mass spectrometry (LC-MS/MS) technique // Food Chem. 2012. V. 132. № 3. Р. 1574–1584.
- 54. Mello D.C. Pesticide residues in dry herbs used for tea preparation by UHPLC-MS/MS: Method validation and analysis // J. Food Composit. Anal. 2024. V. 125. Р. 105–117.
- 55. Wu X., Ding Z. Evaluation of matrix effects for pesticide residue analysis by QuEChERs coupled with UHPLC-MS/MS in complex herbal matrix // Food Chem. 2023. V. 405. Р. 134–155.
- 56. Morsi R. Detection of 11 carbamate pesticide residues in raw and pasteurized camel milk samples using UHPLC-MS/MS: Method development, method validation, and health risk assessment // J. Dairy Sci. 2023.
- 57. Dong Y. Simultaneous detection of pesticides and pharmaceuticals in three types of bio-based fertilizers by an improved QuEChERS method coupled with UHPLC-q-ToF-MS/MS // J. Hazard. Mater. 2023. V. 458. Р. 131–142.
- 58. Afify A.M.R. Multiresidue method of analysis for determination of 150 pesticides in grapes using quick and easy method (QuEChERS) and LC-MS/MS determination // J. Food Agric. Environ. 2010. V. 8. № 2. Р. 602–606.
- 59. Ghoniem I.R., Attallah E.R., Abo-Aly M.M. Determination of acidic herbicides in fruits and vegetables using liquid chromatography tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) // Inter. J. Environ. Analyt. Chem. 2017. V. 97. № 4. Р. 301–312.
- 60. Kostelac D., Anastassiades M. QuEChERS validation method for acidic pesticides. Valenda, Spain: CRL Workshop, 2007. 34 p.
- 61. Steinborn A. Development of a QuEChERS-based method for the simultaneous determination of acidic pesticides, their esters, and conjugates following alkaline hydrolysis // J. Agricult. Food Chem. 2017. V. 65. № 6. Р. 1296–1305.
- 62. Vázquez P.P. Large multiresidue analysis of pesticides in edible vegetable oils by using efficient solid-phase extraction sorbents based on quick, easy, cheap, effective, rugged and safe methodology followed by gas chromatography-tandem mass spectrometry // J. Chromatograp. 2016. V. 1463. Р. 20–31.
- 63. Xu X. Determination of methenamine residues in edible animal tissues by HPLC-MS/MS using a modified QuEChERS method: Validation and pilot survey in actual samples // Food Control. 2016. V. 61. Р. 99–104.
- 64. Ferreira J.A. Determination of pesticides in coconut (Cocos nucifera Linn.) water and pulp using modified QuEChERS and LC-MS/MS // Food Chem. 2016. V. 213. Р. 616–624.
- 65. He Z. Multiresidue analysis of over 200 pesticides in cereals using a QuEChERS and gas chromatography-tandem mass spectrometry-based method // Food Chem. 2015. V. 169. Р. 372–380.
- 66. Lee Y.J. Detection of three herbicide, and one metabolite, residues in brown rice and rice straw using various versions of the QuEChERS method and liquid chromatography–tandem mass spectrometry // Food Chem. 2016. V. 210. Р. 442–450.
- 67. Kardani F. Determination of 323 pesticide residues in Iran’s cereal by GC-MS and HPLC-UV combined with QuEChERS extraction and mixed-mode SPE clean-up method // J. Food Composit. Anal. 2023. V. 124. Р. 105–120.
- 68. Fuke C. Analysis of paraquat, diquat and two diquat metabolites in biological materials by high-performance liquid chromatography // Legal Med. 2002. V. 4. № 3. Р. 156–163.
- 69. Amini S. PVA/Stevia/MIL-88A@ AuNPs composite nanofibers as a novel sorbent for simultaneous extraction of eight agricultural pesticides in food and vegetable samples followed by HPLC-UV analysis // Food Chem. 2022. V. 386. Р. 132–144.
- 70. Ran J. Cucurbit [7] uril as a matrix solid-phase dispersion for the extraction of quaternary ammonium pesticides from vegetables and their determination using HPLC-UV // Food Chem. 2021. V. 350. Р. 129–136.
- 71. Heidari H., Razmi H. Multi-response optimization of magnetic solid phase extraction based on carbon coated Fe3O4 nanoparticles using desirability function approach for the determination of the organophosphorus pesticides in aquatic samples by HPLC-UV // Talanta. 2012. V. 99. Р. 13–21.
- 72. Rejczak T., Tuzimski T. QuEChERS-based extraction with dispersive solid phase extraction clean-up using PSA and ZrO2-based sorbents for determination of pesticides in bovine milk samples by HPLC-DAD // Food Chem. 2017. V. 217. Р. 225–233.
- 73. Yetim N.K. Preparation of AChE immobilized microspheres containing thiophene and furan for the determination of pesticides by the HPLC-DAD method // J. Mol. Struct. 2020. V. 1222. Р. 128–131.
- 74. Watanabe E. Aqueous acetonitrile extraction for pesticide residue analysis in agricultural products with HPLC-DAD // Food Chem. 2014. V. 154. Р. 7–12.
- 75. Xiao Z. Polydimethylsiloxane/metal-organic frameworks coated stir bar sorptive extraction coupled to gas chromatography-flame photometric detection for the determination of organophosphorus pesticides in environmental water samples // Talanta. 2016. V. 156. Р. 126–133.
- 76. Blankson G.K. Contamination levels of organophosphorus and synthetic pyrethroid pesticides in vegetables marketed in Accra, Ghana // Food Control. 2016. V. 68. Р. 174–180.
- 77. Salemi A. Ultrasonic assisted headspace single drop micro-extraction and gas chromatography with nitrogen-phosphorus detector for determination of organophosphorus pesticides in soil //Analyt. Chim. Acta. 2013. V. 769. Р. 121–126.
- 78. Mahpishanian S., Sereshti H., Baghdadi M. Superparamagnetic core-shells anchored onto graphene oxide grafted with phenylethyl amine as a nano-adsorbent for extraction and enrichment of organophosphorus pesticides from fruit, vegetable and water samples // J. Chromatograp. 2015. V. 1406. Р. 48–58.
- 79. Farajzadeh M.A., Mogaddam M.R.A. Acid-base reaction-based dispersive liquid-liquid microextraction method for extraction of three classes of pesticides from fruit juice samples // J. Chromatograp. 2016. V. 1431. Р. 8–16.
- 80. Moawed E.A., Radwan A.M. Application of acid modified polyurethane foam surface for detection and removing of organochlorine pesticides from wastewater // J. Chromatograp. 2017. V. 1044. Р. 95–102.
- 81. Nodeh H.R. New magnetic graphene-based inorganic-organic sol-gel hybrid nanocomposite for simultaneous analysis of polar and non-polar organophosphorus pesticides from water samples using solid-phase extraction // Chemosphere. 2017. V. 166. Р. 21–30.
- 82. Shamsipur M., Yazdanfar N., Ghambarian M. Combination of solid-phase extraction with dispersive liquid-liquid microextraction followed by GC-MS for determination of pesticide residues from water, milk, honey and fruit juice // Food Chem. 2016. V. 204. Р. 289–297.
- 83. Liu J. Comparison of two extraction methods for the determination of 135 pesticides in Corydalis rhizoma, Chuanxiong rhizoma and Angelicae sinensis radix by liquid chromatography-triple quadrupole-mass spectrometry. Application to the roots and rhizomes of Chinese herbal medicines // J. Chromatograp. 2016. V. 1017. Р. 233–240.
- 84. Montory M. First report on organochlorine pesticides in water in a highly productive agro-industrial basin of the Central Valley, Chile // Chemosphere. 2017. V. 174. Р. 148–156.
- 85. Zhang J. β-cyclodextrin functionalized meso-/macroporous magnetic titanium dioxide adsorbent as extraction material combined with gas chromatography-mass spectrometry for the detection of chlorobenzenes in soil samples // J. Chromatograp. 2015. V. 1401. P. 24–32.
- 86. Lu Y., Zhu Y. Determination of chlorobenzenes in textiles by pressurized hot water extraction followed by vortex-assisted liquid-liquid microextraction and gas chromatography-mass spectrometry // J. Chromatograp. 2013. V. 1319. Р. 27–34.
- 87. Bulgurcuoğlu A.E. Development of a switchable solvent liquid phase extraction method for the determination of chlorthiamid, ethyl parathion, penconazole and fludioxonil pesticides in well, tap and lake water samples by gas chromatography mass spectrometry // Microchem. J. 2021. V. 168. Р. 106–112.
- 88. Kaur R. Rapid monitoring of organochlorine pesticide residues in various fruit juices and water samples using fabric phase sorptive extraction and gas chromatography-mass spectrometry // Molecules. 2019. V. 24. № 6. Р. 10–13.
- 89. Wondimu K.T., Geletu A.K. Residue analysis of selected organophosphorus and organochlorine pesticides in commercial tomato fruits by gas chromatography mass spectrometry // Heliyon. 2023. V. 9. № 3. P. 43–49.
- 90. Yasien S. Quantification of multi-class pesticides in stomach contents and milk by gas chromatography-mass spectrometry with liquid extraction method // Arab. J. Chem. 2022. V. 15. № 7. Р. 103937.
- 91. Грибанов Е.Н., Оскотская Э.Р., Саунина И.В. Хромато-масс-спектрометрическое определение пестицидов различных классов в растительных объектах // Завод. лаб. Диагностика мат-лов. 2017. Т. 83. № 5. С. 5–8.
- 92. Тремасова М., Борисова Т. Определение пестицидов: решения Shimadzu // Аналитика. 2016. № 2. С. 38–53.
- 93. Фицев И.М., Шлямина О.В., Сайфутдинов А.М., Макаева А.Р. Пробоподготовка способом QuEChERS при определении пестицидов методом хромато-масс-спектрометрии // Фундаментальные научные исследования как фактор обеспечения конкурентоспособности общества и государства: сб. научн. тр. по мат-лам Международ. научн.-практ. конф., Белгород, 10 апреля 2020 г. Белгород: ООО “Агентство перспективных научных исследований”, 2020. С. 6–9.
- 94. Амелин В.Г., Никешина Т.Б., Третьяков А.В. Идентификация и определение пестицидов и полициклических ароматических углеводородов в воде и пищевых продуктах методом хромато-масс-спектрометрии // Журн. аналит. хим. 2011. Т. 66. № 10. С. 1036–1041.
- 95. Андрияшина Т.В., Саратовских Е.А., Чепегин И.В., Чижова М.А. Исследование содержания техногенных загрязняющих веществ в почвах Орловской области // Вестн. Казан. технол. ун-та. 2013. Т. 16. № 4. С. 67–72.
- 96. Горшкова М.П., Андреева М.А., Киселева Е.М. Мониторинг пестицидов в продукции растительного происхождения // Санитарно-эпидемиологическое благополучие населения и защита прав потребителей: региональные аспекты. Мат-лы Всерос. научн.-практ. конф., посвящ. 100-летию со дня образ-я гос. сан.-эпид. службы России, Иркутск, 23 сентября 2022 г. Иркутск: ООО Типография “ИРКУТ”, 2022. Р. 49–54.
- 97. Мухамметшина А.Г., Рахметова Э.Р., Мухарлямова А.З. Мониторинг остаточных количеств пестицидов и микотоксинов в зерновых культурах // Наука, технологии, кадры – основы достижений прорывных результатов в АПК: Сб. научн.-практ. мат-лов Международ. научн.-практ. конф., Казань, 26–27 мая 2021 г. Вып. XV. Ч. 2. Казань: Татар. ин-т переподготовки кадров агробизнеса, 2021. Р. 77–85.
- 98. Селихова Н.Ю., Кургачев Д.А., Понарин Н.В. Пат. № 2806370 C1 РФ, МПК G01N 33/483, G01N 30/04. Способ одновременного количественного определения стойких хлорорганических пестицидов в шерсти животных методом газовой хромато-масс-спектрометрии: № 2022133128. Заявл. 16.12.2022: опубл. 31.10.2023.
- 99. Кущ И.В., Удавлиев Д.И., Баиров А.Л. Пестициды в пчелином меде и продуктах пчеловодства // Вет. врач. 2023. № 2. С. 17–22.
- 100. Оскотская Э.Р., Грибанов Е.Н., Саунина И.В. Очистка экстрактов проб зерновых культур алюмосиликатом при определении пестицидов методом газовой хроматографии с масс-спектрометрическим детектированием // Журн. аналит. хим. 2017. Т. 72. № 2. С. 170–176.
- 101. Губин А.Р., Суханов П.Т., Кушнир А.А. Применение магнитных молекулярно импринтированных полимеров для онлайн динамического концентрирования 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты и ее последующего определения в почве // Хим. безопасность. 2023. Т. 7. № 1. С. 128–147.
- 102. ПНД Ф 16.1:2.2:23:3.61-09 Количественный химический анализ вод. Методика измерений массовых долей хлорорганических пестицидов и полихлорированных бифенилов в пробах почв, донных отложений, осадков сточных вод, отходов производства и потребления газохроматографическим методов с масс-селективным детектированием: природоохранный нормативный документ федеративный: изд. офиц.: Федеральный центр анализа и оценки техногенного воздействия от 20 октября 2015 г. Дата введения 2015-11-13. М., 2015. 32 с.
- 103. СТБ EN 15662-2017. Продукция пищевая растительного происхождения. Определение остатков пестицидов с применением ГХ-МС и/или ЖХ-МС/МС после экстракции/разделения ацетонитрилом и очистки с применением дисперсионной ТФЭ. Метод QuEChERS. М., 2017. 94 с.
- 104. ПНД Ф 14.1:2:4.212-05 Количественный химический анализ вод. Методика выполнения измерений массовых концентраций 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты (2,4-Д) газохроматографическим методом в пробах питьевых, природных и сточных водах: природоохранный нормативный документ федеративный: ФБУ “ФЦАО” от 1 августа 2014 г. Дата введения 2018-04-18. М., 2014. 35 с.
- 105. del Castillo M.L.R. Evaluation of pesticide residue contents in fruit juice by solid-phase microextraction and multidimensional gas chromatography coupled with mass spectrometry // Talanta. 2012. V. 89. Р. 77–83.
- 106. Nguyen T.D., Lee M.H., Lee G.H. Rapid determination of 95 pesticides in soybean oil using liquid-liquid extraction followed by centrifugation, freezing and dispersive solid phase extraction as cleanup steps and gas chromatography with mass spectrometric detection // Microchem. J. 2010. V. 95. № 1. Р. 113–119.
- 107. Hassan J. Rapid and simple low density miniaturized homogeneous liquid-liquid extraction and gas chromatography/mass spectrometric determination of pesticide residues in sediment // J. Hazard. Mater. 2010. V. 184. № 1–3. Р. 869–871.
- 108. Machado I. Determination of pesticide residues in globe artichoke leaves and fruits by GC-MS and LC-MS/MS using the same QuEChERS procedure // Food Chem. 2017. V. 227. Р. 227–236.
- 109. Silva M.G.D. Simultaneous determination of eight pesticide residues in coconut using MSPD and GC/MS // Talanta. 2008. V. 76. № 3. Р. 680–684.
- 110. Pico Y., Alfarhan A.H., Barcelo D. How recent innovations in gas chromatography-mass spectrometry have improved pesticide residue determination: An alternative technique to be in your radar // TrAC Trend. Analyt. Chem. 2020. V. 122. Р. 115–120.
- 111. Castanheiro A. Leaf-deposited semi-volatile organic compounds (SVOCs): An exploratory study using GCxGC-TOFMS on leaf washing solutions // Chemosphere. 2019. V. 214. Р. 103–110.
- 112. Dunkle M.N. Quantification of the composition of liquid hydrocarbon streams: Comparing the GC-VUV to DHA and GCxGC // J. Chromatograp. 2019. V. 1587. Р. 239–246.
- 113. Deore P. Non-target impact of imidacloprid residues on wine aroma characteristics assessed by GCxGC-TOF/MS analysis and its residual transformation in vinification by UHPLC-Orbitrap-MS analysis // Microchem. J. 2024. V. 197. Р. 109–134.
- 114. Özel M.., Göğüş F., Lewis A.C. Comparison of direct thermal desorption with water distillation and superheated water extraction for the analysis of volatile components of Rosa damascena Mill. using GCxGC-TOF/MS // Analyt. Chim. Acta. 2006. V. 566. № 2. Р. 172–177.
- 115. Patel D. Headspace analysis of E-cigarette fluids using comprehensive two dimensional GCGC-TOF-MS reveals the presence of volatile and toxic compounds // J. Pharma. Biomed. Anal. 2021. V. 196. Р. 113–130.
- 116. Deore P. Non-target impact of imidacloprid residues on wine aroma characteristics assessed by GCxGC-TOF/MS analysis and its residual transformation in vinification by UHPLC-Orbitrap-MS analysis // Microchem. J. 2023. Р. 109–134.
- 117. Dunkle M.N. Quantification of the composition of liquid hydrocarbon streams: Comparing the GC-VUV to DHA and GCxGC // J. Chromatograp. 2019. V. 1587. Р. 239–246.
- 118. Castanheiro A. Leaf-deposited semi-volatile organic compounds (SVOCs): An exploratory study using GCxGC-TOFMS on leaf washing solutions // Chemosphere. 2019. V. 214. Р. 103–110.
- 119. Уколов А.И., Сорокоумов П.Н., Уколова Е.Р. Определение дихлофоса, диметоата, хлорпирифоса, фозалона, диазинона и метилпаратиона в крови и моче методом газовой хроматографии с тандемным масс-селективным детектированием // Аналит. и контроль. 2014. Т. 18. № 3. С. 280–286.
- 120. Li Y.F. Determination of multiple pesticides in fruits and vegetables using a modified quick, easy, cheap, effective, rugged and safe method with magnetic nanoparticles and gas chromatography tandem mass spectrometry // J. Chromatograp. 2014. V. 1361. Р. 77–87.
- 121. Chou Y.C. High-efficient screening of pesticide residues in vegetables using gas chromatography/quadrupole time-of-flight (GC/Q-TOF) // J. Food Composit. Anal. 2023. Р. 105914.
- 122. Pang X. Wide-scope multi-residue analysis of pesticides in beef by gas chromatography coupled with quadrupole Orbitrap mass spectrometry // Food Chem. 2023. V. 407. Р. 135–171.
- 123. Belarbi S. Comparison of new approach of GC-HRMS (Q-Orbitrap) to GC-MS/MS (triple-quadrupole) in analyzing the pesticide residues and contaminants in complex food matrices // Food Chem. 2021. V. 359. Р. 129–132.
- 124. Ракитский В.Н., Федорова Н.Е. Безопасность пищевой продукции: современные приемы многокомпонентного определения пестицидов // Здравоохранение РФ. 2021. Т. 65. № 4. С. 388–393.
- 125. Плешак Е.М., Полянских Е.И., Белышева Л.Л., Батуревич А.И. Валидация способа определения хлорорганических пестицидов в зерне и муке методом хромато-масс-спектрометрии с использованием пробоподготовки QuEChERS // Хим. безопасность. 2022. Т. 6. № 2. С. 243–257.
- 126. Донец М.М., Цыганков В.Ю., Боярова М.Д. Хлорорганические соединения в камбалах рода Hippoglossoides gottsche, 1835 из дальневосточных морей России // Морск. биол. журн. 2020. Т. 5. № 1. С. 29–42.
- 127. Амелин В.Г., Никешина Т.Б., Третьяков А.В. Идентификация стойких органических загрязнителей в поверхностной, грунтовой и питьевой воде методом хромато-масс-спектрометрии // Вода: хим. и экол. 2012. № 2(44). С. 68–75.
- 128. Maski D., Durairaj D. Effects of charging voltage, application speed, target height, and orientation upon charged spray deposition on leaf abaxial and adaxial surfaces // Crop Protect. 2010. V. 29. № 2. Р. 134–141.
- 129. Soto D. Droplet fragmentation using a mesh // Physic. Rev. Fluids. 2018. V. 3. № 8. Р. 63–82.
- 130. Bergeron V. Controlling droplet deposition with polymer additives // Nature. 2000. V. 405. № 6788. Р. 772–775.
- 131. Song M. Controlling liquid splash on superhydrophobic surfaces by a vesicle surfactant // Sci. Аdv. 2017. V. 3. № 3. Р. e1602188.
- 132. Yuan W. Natural green-peel orange essential oil enhanced the deposition, absorption and permeation of prochloraz in cucumber // RSC Аdv. 2019. V. 9. № 35. Р. 20395–20401.
- 133. Damak M., Hyder M.N., Varanasi K.K. Enhancing droplet deposition through in situ precipitation // Nat. Commun. 2016. V. 7. № 1. Р. 12560.
- 134. Li Y. Whole contact line pinning for droplets impacting on a hydrophobic surface due to hydrophilic TiO2 nanoparticle addition // Langmuir. 2021. V. 37. № 22. Р. 6673–6680.
- 135. Wibowo D. Sustained release of fipronil insecticide in vitro and in vivo from biocompatible silica nanocapsules // J. Аgricult. Food Сhem. 2014. V. 62. № 52. Р. 12504–12511.
- 136. Zhu H. Avermectin loaded carboxymethyl cellulose nanoparticles with stimuli-responsive and controlled release properties // Industr. Сrops Рrod. 2020. V. 152. Р. 112–117.
- 137. Luo J. Self-assembled degradable nanogels provide foliar affinity and pinning for pesticide delivery by flexibility and adhesiveness adjustment // ACS nano. 2021. V. 15. № 9. Р. 14598–14609.